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P19小鼠畸胎瘤細胞（STR鑒定）

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產(chǎn)品簡介

P19小鼠畸胎瘤細胞（STR鑒定）加拿大渥太華大學(xué)的Mc Burney 等在1982 年從雄性小鼠畸胎瘤中分離得到的 , 是一種能夠在體外培養(yǎng)的多能干細胞, P19 細胞團經(jīng)RA 誘導(dǎo)可分化成神經(jīng)元、膠質(zhì)細胞和纖維母細胞; 而經(jīng)二甲基亞砜（DM SO ）誘導(dǎo)則分化成心肌、骨骼肌和平滑肌細胞;在P19細胞向神經(jīng)元分化的過程中，神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因的表
英文名稱:Mouse Teratoma Cells

詳細介紹

P19小鼠畸胎瘤細胞（STR鑒定）
英文名稱：Mouse Teratoma Cells
規(guī)格：1*10 ⁶
細胞介紹
加拿大渥太華大學(xué)的Mc Burney 等在1982 年從雄性小鼠畸胎瘤中分離得到的 , 是一種能夠在體外培養(yǎng)的多能干細胞, P19 細胞團經(jīng)RA 誘導(dǎo)可分化成神經(jīng)元、膠質(zhì)細胞和纖維母細胞; 而經(jīng)二甲基亞砜(DM SO ) 誘導(dǎo)則分化成心肌、骨骼肌和平滑肌細胞;在P19細胞向神經(jīng)元分化的過程中，神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因的表達模式基本模擬了正常小鼠神經(jīng)發(fā)育過程, 因此, P19 目前被用作一個研究神經(jīng)發(fā)育的體外模型。P19 細胞作為研究神經(jīng)分化機制的模型, 顯著區(qū)別于其他細胞系的四大特點是: ①它具有正常小鼠的二倍體核型, 細胞分裂快, 可在體外迅速大量擴增, 多次傳代也不喪失其分化能力。②P19 細胞具有多種分化潛力, 不同誘導(dǎo)條件下可定向分化成不同類型的細胞, 種植到孕鼠囊胚中能分化成多種類型細胞。③根據(jù)P19 細胞誘導(dǎo)分化分階段進行的特點, 能將神經(jīng)分化的早期機制與參與突起延伸的機制分開研究。④該細胞易于轉(zhuǎn)染, 且轉(zhuǎn)染后仍能正常分化, 適于進行細胞基因研究。通過轉(zhuǎn)染正常或突變的目的基因, 增強或抑制它們的表達水平可用于研究這些基因在神經(jīng)分化中的作用。另外, 利用反義RNA 阻斷內(nèi)源蛋白的表達, 可用來觀察這些蛋白在神經(jīng)分化中的作用。
一、細胞特性
1）來源：胚胎；畸胎癌
2）形態(tài)：上皮細胞樣
3）含量：>1x106 個/mL
4）污染：支原體、細菌、酵母和真菌檢測為陰性
5）規(guī)格：T25瓶或者1mL凍存管包裝
二、細胞收到后處理
P19小鼠畸胎瘤細胞（STR鑒定）在培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)至良好狀態(tài)后灌滿*培養(yǎng)液并封好瓶口是細胞運輸?shù)霓k法。收到細胞回到自己的實驗室后，先打開外包裝，用75%酒精噴灑整個瓶消毒后放到超凈臺內(nèi)，嚴格無菌操作。鏡下觀察：未超過80%匯合度時，可將瓶裝的*培養(yǎng)液移入廢液缸中，原瓶（T25瓶）保留6-8ml*培養(yǎng)液，懸浮細胞需離心處理，放入37℃、5%CO2孵箱培養(yǎng)；超過80%匯合度時，根據(jù)情況傳代或者凍存，具體操作見細胞培養(yǎng)步驟。
三、細胞培養(yǎng)步驟
1）復(fù)蘇細胞：將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍，加入5mL培養(yǎng)基混合均勻。在1000RPM條件下離心5分鐘，棄去上清液，補加1-2mL培養(yǎng)基后吹勻。然后將所有細胞懸液加入培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過夜（或?qū)⒓毎麘乙杭尤?cm皿中，加入約6ml培養(yǎng)基，培養(yǎng)過夜）。第二天換液并檢查細胞密度。
2）傳代：如果細胞密度達80%-90%，即可進行傳代培養(yǎng)。
1、對于貼壁細胞，傳代可參考以下方法：
1. 棄去培養(yǎng)上清，用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。
2. 加2ml消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培養(yǎng)瓶中，置于37℃培養(yǎng)箱中消化1-2分鐘，然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況，若細胞大部分變圓并脫落，迅速拿回操作臺，輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加少量培養(yǎng)基終止消化。
3. 按6-8ml/瓶補加培養(yǎng)基，輕輕打勻后吸出，在1000RPM條件下離心5分鐘，棄去上清液，補加1-2mL培養(yǎng)液后吹勻。
4. 將細胞懸液按1：2到1：5的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或者瓶中。
2、對于懸浮細胞，傳代可參考以下方法：
方法一：收集，1000RPM條件下離心5分鐘，棄去上清液，補加1-2mL培養(yǎng)液后吹勻，將細胞懸液按1：2到1：5的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或者瓶中。
方法二：可選擇半數(shù)換液方式，棄去半數(shù)培養(yǎng)基后，將剩余細胞懸起，將細胞懸液按1：2到1：3的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或者瓶中。
3）細胞凍存：待細胞生長狀態(tài)良好時，可進行細胞凍存。貼壁細胞凍存時，棄去培養(yǎng)基后加入少量胰酶，細胞變圓脫落后，進行離心收集，1000RPM條件下離心5分鐘，去除上清，按凍存數(shù)量加入血清及DMSO，凍存比例為90%FBS+10%DMSO。
出現(xiàn)問題，可重發(fā)的情況有哪些？判定標準是什么？
（1）細胞運輸途中遭遇的各種問題，細胞丟失、破損、漏液等，重發(fā)；